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ネオグリコプロテイン機能化蛍光金ナノクラスターによる植物レクチン検出と樹状細胞イメージング

概要

糖鎖-タンパク質相互作用は、受精、シグナル伝達、宿主-病原体コミュニケーションなどの不可欠な生物学的プロセスを支える。糖鎖認識の複雑さは高度な分析ツールを必要とする。ここでは、標的リガンドとして二本鎖N-糖鎖(G0)、キャリアタンパク質としてオボアルブミン(OVA)、自己発光金コアを組み合わせたネオグリコプロテイン機能化蛍光金ナノクラスタ(G0-OVA-AuNC)の最初の合成を報告する。G0-OVA-AuNCが植物レクチンの選択的センサーおよびマウス樹状細胞(DC)の強力なイメージングプローブとして機能することを実証した。

はじめに

金ナノクラスタ(AuNC)は10〜100個の金原子からなり、サイズ依存的蛍光を示し、バイオセンシングとイメージングに魅力的。従来の有機色素や量子ドットと異なり、AuNCは大きなストークスシフト、赤色〜近赤外発光、優れた光化学安定性を持ち、組織透過窓での応用を可能にする。タンパク質テンプレートAuNCは2009年にウシ血清アルブミンで最初に報告され、以来、水溶性・生体適合性蛍光体設計の多用途プラットフォームとなっている。しかし、糖鎖修飾タンパク質はナノクラスタ足場として未開拓であり、糖鎖がタンパク質折りたたみ、安定性、受容体結合を調節する重要な役割を果たすにもかかわらずである。合成ネオグリコプロテイン(定義された糖鎖を化学的に結合したタンパク質)は、構造的完全性を保ちながらタンパク質に新機能を付与する戦略を提供する。

本研究では、C5アミノリンカーとジスクシンイミジルスペル酸エステル(DSS)を介して合成二本鎖G0糖鎖をOVAに結合し、G0-OVA-AuNCを作製した。物理化学的特性を評価し、レクチン凝集アッセイで糖鎖アクセス性を検証、in vitroで樹状細胞(DC)ラベル能を評価した。結果は、G0-OVA-AuNCが堅牢な多価レクチンセンサーおよび免疫細胞用強力イメージング剤であることを確立する。

結果と考察

非修飾OVA-AuNCプロトコルを応用し、G0-OVA-AuNC合成を最適化。15 mg mL-1 OVA溶液にHAuCl4·3H2O(4.2 mM)とNaOH(150 mM)を混合し、マイクロ波照射(100 ℃, 6分)で淡褐色クラスタを得た。350 nm励起で670 nmに明るい赤色蛍光を発光。UV-Visスペクトルにプラズモン共鳴バンドがなく、粒子サイズ5 nm未満を確認。TEMで平均コア径1.9 ± 0.7 nm、動的光散乱で水力学的直径8.7 ± 2.5 nm、単一タンパク質がコアをカプセル化していることに一致。量子収率約4%、pH 3〜11および胎児牛血清中で光安定性を示し、生物学的アッセイに適する。

G0機能化クラスタでは、DSSを用いてG0糖鎖をOVAに結合し、タンパク質あたり2-3、3-4、または5-6個の糖鎖を持つネオグリコプロテインを得た(SDS-PAGEとMALDI-TOFで検証)。同条件でAuNC形成を行い、G0-OVA-AuNCの光学特性はOVA-AuNCと一致:278 nm吸収と670 nm発光ピーク。TEMでコア径1.6 ± 0.5 nmを確認。CDスペクトルはアルカリ合成によりランダムコイル二次構造を示唆するが、糖鎖モイエティはレクチン結合に対してアクセス可能であった。

バンディレア・シンプリシフォリアレクチン-II(BSL-II)とソラヌム・ツベロサムレクチン(STL)を用いたレクチン凝集アッセイで、G0-OVA-AuNC(5/6)に濃度依存的蛍光クエンチングが観察された。対照レクチン(アレイリア・アウランティア、AAL)は効果なし。クエンチングは直線的検量線に従い、検出限界はBSL-IIで2.83 µM、STLで2.35 µM。糖鎖数が少ないG0-OVA-AuNC(2/3)では凝集せず、多価糖鎖提示の必要性を示した。細胞培養培地中でのアガロースゲル電気泳動で、複雑な生物学的環境下でもレクチン結合が効率的であることを確認。

マウス脾臓由来DC(CD11c+)をG0-OVA-AuNC(3/4)でインキュベートした共焦点顕微鏡観察で、40分以内に急速な取り込みが確認され、蛍光は細胞内に局在し、未処理対照では見られなかった。3D再構成で細胞内クラスタ分布を確認。

以上、初のネオグリコプロテイン保護AuNCを提示し、多価糖鎖による選択的レクチン認識を実証し、樹状細胞イメージング能力を確立した。堅牢な蛍光、水溶性、pH安定性により、糖鎖-タンパク質相互作用研究と免疫イメージングのための従来色素の有望な代替となる。

結論

G0-OVA-AuNCを合成・特性評価し、糖鎖アクセス性とレクチン特異的凝集を確認。多価糖鎖提示が効率的架橋に不可欠であり、クラスタは高い光安定性と水溶性を維持。マウス樹状細胞のin vitroイメージングで、自己蛍光プローブとしての高い能力を検証。これらの知見は、ネオグリコプロテイン機能化AuNCを糖鎖-タンパク質相互作用アッセイ、免疫細胞イメージング、潜在的治療応用のための多用途ツールとしてさらに探求することを支持する。

実験方法

材料

すべての溶液は超純水(18 MΩ cm)で調製。金(III)塩化物三水和物、NaOH、トリエチルアミンはSigma-Aldrich製。オボアルブミンはHyglos製。DSSとDMSOはThermo Fisher製。G0糖鎖は先行研究で合成。

AuNC合成 一般手順

15 mg mL-1タンパク質を超純水に溶解、4.2 mM HAuCl4·3H2Oを加え5分攪拌、次に150 mM NaOHを添加。混合物をマイクロ波反応器で100 ℃、6分加熱。クラスタを透析(10 kDa MWCO)で超純水に対して透析。蛍光はVarioskan Flashプレートリーダー(λex=350 nm)で記録。アガロースゲル(0.75%)とTEM(200 kV)でサイズ評価。CDで二次構造評価。XPSで金酸化状態決定。

レクチン凝集アッセイ

G0-OVA-AuNC(0.2 mg mL-1)をレクチン(AAL, STL, BSL-II、0-10 µM)とTSMバッファーで混合。一晩インキュベート後、遠心分離し上清蛍光測定。STLでUV下沈殿観察。

マウス脾臓DC単離

C57BL/6Jマウス脾臓を単一細胞懸濁液に処理。CD11c+細胞を磁気活性細胞選別(Miltenyi)で単離、ポリ-D-リシンコートカバーガラス上で培養。

DCによるG0-OVA-AuNC取り込み

DC(2×106細胞)を150 µg mL-1 G0-OVA-AuNC(3/4)と37 ℃で40分インキュベート、洗浄、3% PFAで固定、Zeiss LSM 510共焦点顕微鏡(365 nmレーザー、63×油浸対物)で撮像。

略語

AAL
アレイリア・アウランティアレクチン
AuNC
金ナノクラスタ
BSA
ウシ血清アルブミン
BSL-II
バンディレア・シンプリシフォリアレクチン-II
CD
円二色性
CLR
C型レクチン受容体
DC
樹状細胞
DMSO
ジメチルスルホキシド
DSS
ジスクシンイミジルスペル酸エステル
FBS
胎児牛血清
G0
二本鎖N-糖鎖
G0-OVA-AuNC
ネオグリコプロテイン機能化金ナノクラスタ
HAuCl4·3H2O
クロロ金酸
IMDM
イスコーブ改変ダルベッコ培地
IR
赤外線
LOD
検出限界
MACS
磁気活性細胞分離
OVA
オボアルブミン
QY
量子収率
STL
ソラヌム・ツベロサムレクチン
TEM
透過型電子顕微鏡
XPS
X線光電子分光

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